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Y2HGold酵母感受态细胞

Y2HGold Chemically Competent Cell   100μl/支     -80℃(3个月)

Carrier DNA (10 μg/μl)               10μl/支      -20℃(12个月)

PEG/LiAC                         6.5ml        4℃ (12个月)

货号 规格 纯度
Y0050 50×100 μL

产品基本信息

Y2HGold菌株是GAL4系统酵母双杂实验用菌株,MATa型,可直接转化质粒或与MATα型酵母菌株Y187通过mating操作进行蛋白互作验证或筛库试验。Transformation marker为:trp1,leu2,报告基因为:AbAr,HIS3,ADE2,MEL1。Y2HGold-GAL4 酵母双杂系统需要两种质粒配套使用:pGBKT7和pGADT7。质粒pGBKT7的筛选标志为TRP1,用于表达DNA-BD (来自酵母转录因子GAL4N端1~174位氨基酸)与目标蛋白 (Bait)的融合蛋白;质粒pGADT7 的筛选标志为LEU,用于表达AD(GAL4 C端768 ~881 位氨基酸)与目标蛋白 (Prey)的融合蛋白。GAL4 系统原理:一个完整的酵母转录因子GAL4可分为功能上相互独立的两个结构域:位于N端1~174位氨基酸区段的DNA结合域 (DNA-BD)和位于C端768~881 位氨基酸区段的转录激活域 (AD)。DNA-BD能够识别GAL4-responsive gene的上游激活序列UAS,并与之结合。而AD可以启动UAS下游的基因进行转录。BD和AD单独存在不能激活转录,但当二者接近时,则呈现完整的GAL4活性,使含有UAS的启动子下游基因转录表达。正常条件下,BD不与AD结合,将要检测的蛋白质分别与BD和AD融合,形成 bait融合蛋白 (bait -BD)和 prey融合蛋白 (prey-AD),如果 bait和 prey发生相互作用,就会促使 BD和 AD的相互接近,形成完整的GAL4,从而激活报告基因的转录。Y2HGold有四个报告基因:AbAr,HIS3,ADE2,MEL1,分别由三种不同的启动子 (G1,G2,M1)启动,这三种启动子只有GAL4识别的17 bp核心区相同,其余部分均不同,大大降低了酵母双杂假阳性发生的概率。此外新报告基因AbAr与以前的营养缺陷报告基因相比具有更低背景的优点,也可以降低酵母双杂假阳性发生的概率。Y2HGold感受态细胞经pGADT7质粒(7988bp,AmpR)检测转化效率>104cfu/μg DNA。

基因型:

MATa, trp1-901, leu2-3, 112, ura3-52, his3-200, gal4Δ, gal80Δ, LYS2::GAL1UAS-Gal1TATA-His3,GAL2UAS- Gal2TATA-Ade2 URA3::MEL1UAS-Mel1TATA AUR1-C MEL1

存储条件

-80°

使用方法

  1. Carrier DNA 的预处理:将Carrier DNA 插入95℃金属浴5 min或插入浮漂中95℃水浴5min,加热后快速插入冰中。
  2. 取100 µl冰上融化的Y2HGold感受态细胞,依次加入预冷的目的质粒2-5 µg,预处理后的Carrier DNA 10 µl,PEG/LiAc 640 µl并吸打几次混匀,30℃水浴摇床60min。
  3. 将管放42℃水浴17 min,冰浴5min,5000rmp离心5min。
  4. 弃上清,加1ml YPD重悬,30°C恒温摇床1h。
  5. 5000rmp离心5min去上清,1ml无菌水洗2次,离心去上清。
  6. 加100ul无菌水重悬,涂相应缺陷型平板。30℃培养3-4天。 

注意事项

  1. 初次使用 Carrier DNA,请把装有 Carrier DNA 的管子在沸水中煮沸 5 min,然后立即放在冰上,用后放在-20℃储存备用。 下次使用前请于冰上解冻 Carrier DNA。反复冻融 3-5 次后需重新变性Carrier DNA。 
  2. 感受态细胞最好在冰上融化。
  3. 转化高浓度的质粒可相应减少最终用于涂板的菌量。
  4. 酿酒酵母对温度敏感,适宜的生长温度是 28℃-30℃,温度超过31℃影响酵母生长。
  5. 酵母在缺陷培养基中生长速度比YPDA培养基慢,培养基中缺陷成分越多,生长越慢。